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我們建議血清應保存在-5 ℃至-20 ℃。然而，若存放于4℃時，請勿超過一個月。若您一次無法用完一瓶，建議您無菌分裝血清至恰當的滅菌容器內，再放回冷凍。如何解凍血清才不會使產品質量受損?
我們建議您將血清從冷凍箱取出后，先置于2～8 ℃冰箱使之融解，然后在室溫下使之全融。但必須注意的是，融解過程中必須規則地搖晃均勻。

關于細胞不貼壁原因及解決辦法：

●胰蛋白酶消化過度

●支原體污染

●培養基pH值過堿（NaHCO3分解）

●細胞老化

●接種細胞起始濃度太低或太高

解決方法：

●縮短胰蛋白酶消化時間或降低胰蛋白酶濃度

●分離培養物，檢測支原體。清潔支架或培養箱。如發現支原體污染，丟棄培養物

●使用無菌醋酸溶液調整pH值或充入無菌CO2

●啟用新的保種細胞

●調節*接種細胞濃度

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如何運輸樣本

●如用冰運輸血樣，在運輸過程中應注意避免試管傾倒和搖晃。

●細胞及RNA如用冰運輸，要保證運輸過程中樣品布溶解----冬季應保證冰量充足，夏季不建議用冰運輸，長途水溶的RNA應當用干冰。

●DNA不易降解，常溫即可運輸。

●用干冰/冰運輸的樣品，應深埋在干冰/冰下（充分接觸）。由于今年起干冰不能空運，外地送樣應放足干冰，以保證樣品的安全。

●液氮運輸則切忌旋緊蓋子，還要盡量避免震動和搖晃，以免氮氣膨脹而爆炸。長途運輸不建議用液氮。

●如用液氮運輸，除凍存管外其他各類試管也必須是螺口的，用封口膜密封；不建議國產試管（密封性較差），裝大量組織的大容積國產試管（如50ml 離心管）要打孔。

如何保存樣本：

接樣

1．從活體上取下的組織應在15分鐘內用液氮浸沒迅速降溫，干冰或低溫冰箱降溫速度慢，可能會引起降解。

2．組織從液氮中轉移入試管時，應避免將液氮帶入試管，否則會引起試管爆裂。

3．體積較小的組織可以直接用RNAlater保存；體積較大的組織，如用RNA later保存必須切成小塊，張、寬、高至少有一維長度小于5mm，按1體積組織加入10倍體積的RNA later,將組織塊*浸沒。在4℃冰箱放置過夜，使RNA later充分浸潤組織。第二天轉移至-20℃冰箱保存。細胞不建議用RNAlater保存（不利于細胞收集）。