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Gibco胎牛血清保存方法

發布日期: 2019-06-25
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GIBCO胎牛血清、GIBCO血清價格

在細胞培養過程中,經常加入5%-20%的胎牛血清,常使用的Gibco胎牛血 清濃度是10%。高濃度的血清可能改變細胞的基因表達譜,影響后續實驗的結果,我們在實驗中使用10%的Gibco美國 胎牛血清培養293T細胞,效果非常好。但是有些細胞也會使用5%的Gibco FBS或者20%的Gibco胎牛血清,要根據具體 細胞選擇合適的Gibco胎牛血清濃度。

Gibco胎牛血清保存方法
1、需要長期保存的血清必須儲存于-20℃ - 70℃ 低溫冰箱中。4℃冰箱中保存時間切勿超過1個月。切勿將血清在 37℃放置太久,否則血清會變得渾濁,同時血清中的有效成分會被破壞,而影響血清質量。如果一次無法用完一瓶,可 將40~45ml分裝于無菌50ml離心管中。由于血清結冰時體積會增加約10%,因此,血清在凍入低溫冰箱前,必須預留一 定體積空間,否則易發生污染或玻璃瓶凍裂。

2、一般廠商提供的血清為無菌,無需再過濾除菌。如發現血清有懸浮物,則可將血清加入培養液內一起過濾,切勿直接 過濾血清。

3、瓶裝血清解凍需采用逐步解凍法:-20℃ 至 -70℃ 低溫冰箱中的血清放入4℃冰箱中溶解1天.然后移入室溫,待全 部溶解后再分裝,一般以50ml無菌離心管可分裝40~45ml。在溶解過程中須規則搖晃均勻(小心勿造成氣泡),使溫度 與成分均一,減少沈淀的發生。.切勿直接將血清從-20℃進入37℃解凍,這樣因溫度改變太大,容易造成蛋白質凝集而 出現沉淀。

4、熱滅活是指56℃, 30分鐘加熱已*解凍的血清.加熱過程中須規則搖晃均勻.此熱處理的目的是使血清中的補體 成分滅活.除非必須,一般不建議作此熱處理,因為熱處理會造成血清沉淀物顯著增多,而且還會影響血清的質量.補體 參與反應有:細胞毒作用, 平滑肌細胞收縮, 肥大細胞和血小板釋放組胺, 增強吞噬作用, 促進淋巴細胞和巨噬細胞 發生化學趨化和活化。

5、血清中的沉淀物 絮狀物:主要是血清中的脂蛋白變性及解凍后血清中纖維蛋白造成,這些絮狀物不會影響血清本身 的質量.可用離心3000rpm,5分鐘去除,也可不用處理。 顯微鏡下"小黑點":經過熱處理過的血清,沉淀物 的形成會顯著增多。有些沉淀物在顯微鏡下觀察象"小黑點",常誤認為血清受污染。一般情況下,此小黑 點不會影響細胞生長,但如果懷疑血清質量,則應立即停止使用,更換另一批號的血清。

Gibco胎牛血清使用中遇到的常見問題總結
一、血清滅活問題。

1、問:加到培養基中的血清必須滅活嗎?

答:不是必須的,看做什么實驗了。

2、問:Gibco胎牛血清滅活是56℃ 30分鐘嗎?

答:如果用于培養大多數的腫瘤細胞,血清一般是不需要滅活的,這樣可以有效保存血清中的生長因子。 但是如果用于培養一些表面具有補體受體的細胞,如內皮細胞,血清是需要滅活,一般是56℃,30min。

3、問:我要做滋養細胞培養,胎牛血清要滅活嗎?

答:進口的一般都已滅活,國產的不一定,還是滅活一下再用較安全。

4、問:我用病毒上清轉染細胞,培養用的血清需要滅活嗎?因為血清中可能有些補體和抗體,是不是會影 響轉染?我想未滅活的血清中含些抗體補體可能會和病毒相結合,影響轉染,正確嗎?細胞是單核細胞白血病細胞, 病毒是病毒包裝細胞PT67收集的病毒上清。為什么要用無血清培養基加病毒孵育幾小時,目的是什么?

答:血清一定要滅活,可以先用無血清培養基加病毒孵育幾小時以后再加血清。避免雜蛋白對病毒和宿主 結合過程的干擾,一般是2-6小時,根據細胞的狀態決定。血清不一定需要滅活,滅活的目的是將血清中的補體滅活 !這要根據實際情況而定,如果沒有把握那就滅活吧,也不麻煩56度半個小時。

5、問:(1)我買的是Gibco北美胎牛血清,要滅活嗎?有些說法是需要,有些說直接解凍后就可以加入到培 養基中;我配制胰蛋白酶液,用的是D-PBS,有關系嗎?

答:關于血清的熱滅活,是很多人感興趣也存在一定爭議的話題。大多數實驗室將血清的熱滅活還是作為 常規來執行,因為有兩個作用,是滅活補體,第二是滅活血清中可能存在的支原體。但是實驗者并沒有考慮熱處 理對血清中的生長因子、氨基酸等成分帶來的負面影響。

我在實驗室處理血清的時候,有一次水浴箱在滅活過程中出現故障,溫度升高到80℃,血清變成了凝膠狀 ,我重新處理了另外一份血清,將兩份血清對比,發現高溫直接影響到血清所含的抗體蛋白。在56℃下滅活半小時以 上,肯定也會對里面的蛋白起到破壞作用。下次有機會我做個延長滅活時間的實驗試試,看看到底有多大的影響。熱 滅活之后,血清放在四度冰箱久了,就會有沉淀產生,這常常會被認為是微生物污染或者是黑膠蟲污染。為了驗證到 底有沒有污染,常常又會把血清放置37℃溫育,但是血清中的蛋白會進一步析出,后還是要做鏡檢,無菌培養試驗 ,和革蘭氏染色試驗,非常麻煩。

我看過一份資料,里面提到70%的實驗者認為滅活是理所當然的。常規滅活建議的溫度在45℃到62℃之間, 而時間則從15分鐘到60分鐘不等。其中常用的手法是56℃熱處理30分鐘。隨著血清采集、處理、加工工藝的提高 ,許多早先認為是熱滅活的原因已經不再成立,只有少數對血清進行熱滅活的研究者在實驗中證實了這一步驟的有效 性和必要性。有人比較過11個不同細胞株,發現其中熱滅活對6 個細胞株(HBAE,MDBK,Vero,成纖維細胞,MRC-5) 的生長帶來負面影響,三個細胞株(FOX-NY,MDCK和CHO-K1)不受熱滅活的影響,而只有兩個細胞株(Balb/3T3, Sp2/0Ag14 hybrid),在熱滅活之后,細胞生長有輕微的改善。所以,在正常的操作下,熱滅活通常對細胞的生長沒 有明顯的促進作用。

你可以摸索一下,血清從-20℃冰箱拿出來之后在常溫解凍,然后混勻分裝成兩份,一份滅活,一份不滅活 ,比較這兩種血清對細胞是否有影響。然后再確定是滅活還是不滅活。這個過程多也就一個星期。同時你還要考慮 血清滅活與否對你后續的實驗有沒有影響。

問:(2)分裝后的血清從-20℃取出放4℃讓其液化,卻見血清比較混濁,有沉淀產生,這屬正常嗎?

答:正常。


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